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技術(shù)文章
細(xì)胞原代培養(yǎng)可以:
(1)為研究生物體細(xì)胞的生長、代謝、繁殖提供有力的手段;
(2)為傳代培養(yǎng)創(chuàng)造條件;(
3)服務(wù)于臨床實踐,用于藥物篩選等。
實驗方法原理
將動物機體的各種組織從機體中取出,經(jīng)各種酶(常用胰蛋白酶)、螯合劑(常用EDTA)或機械方法處理,分散成單細(xì)胞,置合適的培養(yǎng)基中培養(yǎng),使細(xì)胞得以生存、生長和繁殖,這一過程稱原代培養(yǎng)。因此,較為嚴(yán)格地說是指成功傳代之前的培養(yǎng),此時的細(xì)胞保持原有細(xì)胞的基本性質(zhì),如果是正常細(xì)胞,仍然保留二倍體數(shù)。但實際上,通常把*代至第十代以內(nèi)的培養(yǎng)細(xì)胞統(tǒng)稱為原代細(xì)胞培養(yǎng)。zui常用的原代培養(yǎng)有組織塊培養(yǎng)和分散細(xì)胞培養(yǎng)。
實驗材料:胎鼠 新生鼠
試劑、試劑盒:1640培養(yǎng)基 牛血清 胰酶 Hank’s液 碘酒
儀器、耗材:培養(yǎng)箱 培養(yǎng)瓶 青霉素瓶 小玻璃漏斗 平皿 吸管 移液管 紗布 手術(shù)器械 血球計數(shù)板 離心機 水浴箱
實驗步驟
一、實驗材料準(zhǔn)備
1. Hank’s液配方:KH2PO4 0.06 g,Nacl 8.0 g,NaHCO3 0.35 g,KCl 0.4 g,葡萄糖1.0 g,Na2HPO4·H2O 0.06 g,加H2O至 1 000 ml。Hank’s液可以高壓滅菌。4℃下保存。
二、具體操作
1. 將孕鼠或新生小鼠拉頸椎致死,置75%酒精泡2-3秒鐘(時間不能過長、以免酒精從口和肛門浸入體內(nèi))再用碘酒消毒腹部,取胎鼠帶入超凈臺內(nèi)(或?qū)⑿律∈笤诔瑑襞_內(nèi))解剖取肝臟,置平皿中。
2. 用Hank’s液洗滌三次,并剔除脂肪,結(jié)締組織,血液等雜物。
3. 用手術(shù)剪將肝臟剪成小塊(1 mm2),再用Hank’s液洗三次,轉(zhuǎn)移至小青霉素瓶中。
4. 視組織塊量加入5-6倍的0.25%胰酶液,37℃中消化20-40分鐘,每隔5分鐘振蕩一次,或用吸管吹打一次,使細(xì)胞分離。
5. 加入3-5 ml培養(yǎng)液以終止胰酶消化作用(或加入胰酶抑制劑)。
6. 靜置5-10分鐘,使未分散的組織塊下沉,取懸液加入到離心管中。
7. 1 000 rpm,離心10分鐘,棄上清液。
8. 加入Hank’s液5 ml,沖散細(xì)胞,再離心一次,棄上清液。
9. 加入培養(yǎng)液1-2 ml(視細(xì)胞量),血球計數(shù)板計數(shù)。
10. 將細(xì)胞調(diào)整到5×105/ml左右,轉(zhuǎn)移至25 ml細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,37℃下培養(yǎng)。
注意事項
1. 自取材開始,保持所有組織細(xì)胞處于無菌條件。細(xì)胞計數(shù)可在有菌環(huán)境中進行。
2. 在超凈臺中,組織細(xì)胞、培養(yǎng)液等不能暴露過久,以免溶液蒸發(fā)。
3. 凡在超凈臺外操作的步驟,各器皿需用蓋子或橡皮塞,以防止細(xì)菌落入。
4. 操作前要洗手,進入超凈臺后手要用75%酒精或0.2%新潔爾滅擦試。試劑等瓶口也要擦試。
5. 點燃酒精燈,操作在火焰附近進行,耐熱物品要經(jīng)常在火焰上燒灼,金屬器械燒灼時間不能太長,以免退火,并冷卻后才能夾取組織,吸取過營養(yǎng)液的用具不能再燒灼,以免燒焦形成碳膜。
6. 操作動作要準(zhǔn)確敏捷,但又不能太快,以防空氣流動,增加污染機會。
7. 不能用手觸已消毒器皿的工作部分,工作臺面上用品要布局合理。
8. 瓶子開口后要盡量保持45°斜位。
9. 吸溶液的吸管等不能混用。