（1）純化法

在去除不需要的組織后，使用無菌的解剖刀和剪子把剩余的組織切成3~4 mm小片，通過懸浮在無鈣鎂的中清洗組織碎片。讓組織碎片沉淀，去除上清液。重復(fù)清洗2~3次。將盛有組織碎片的容器置于冰上，去除殘留的上清液。加入0.25%溶解在無鈣鎂的（100 mg組織加入1ml ）。在4℃孵育6~18h，使幾乎沒有活性的酶盡可能滲透進(jìn)去。移棄組織碎片中在37℃孵育包含殘留的組織碎片20~30分鐘。在組織碎片加入熱的培養(yǎng)基，用移液管輕輕地分散組織。如果使用無血清培養(yǎng)基，要加入大豆抑制劑。

通過無菌不銹鋼絲網(wǎng)（100~200 mm）過濾，分散所有剩余組織，計(jì)數(shù)和接種細(xì)胞，進(jìn)行培養(yǎng)。

（2）膠原酶純化法

用無菌解剖刀和剪子把剩余組織切成3~4 mm小片，用平衡液清洗組織碎片幾次。加入膠原酶（50～200單位/ml，溶解在平衡液中），在37℃孵育4~18小時(shí)。加入3mM CaCl2增加解離效率。通過無菌不銹鋼絲網(wǎng)或尼龍網(wǎng)過濾細(xì)胞懸液，以分離分散細(xì)胞、組織碎片和較大的碎片。如果需要進(jìn)一步的解聚，在碎片中加入新鮮的膠原酶。通過離心在平衡液中清洗懸液幾次。再一次在培養(yǎng)基中懸浮細(xì)胞，計(jì)數(shù)和接種細(xì)胞，進(jìn)行培養(yǎng)。

（3）Dispase純化法

用無菌解剖刀和剪子把剩余組織切成3~4 mm小片，用不含鈣鎂的清洗組織碎片幾次。加入Dispase（0.6～2.4單位/ml 溶解在無鈣鎂的）在37℃孵育20分鐘~幾個(gè)小時(shí)。通過無菌不銹鋼絲網(wǎng)或尼龍網(wǎng)過濾細(xì)胞懸液，以分離分散細(xì)胞、組織碎片和較大的碎片。如果需要進(jìn)一步的解聚，在碎片中加入新鮮的Dispase。

通過離心在中清洗懸液幾次，再一次在培養(yǎng)基中懸浮細(xì)胞，計(jì)數(shù)和接種細(xì)胞，進(jìn)行培養(yǎng)。

分離細(xì)胞后，首-次傳代需要注意的問題：

傳代培養(yǎng)時(shí)先觀察細(xì)胞的活性。細(xì)胞的活率應(yīng)該超過90%，密度控制在80%左右。

對于無血清培養(yǎng)基，需要降低使用量。

1. 移棄使用過的細(xì)胞培養(yǎng)基。

2. 使用不包含有鈣鎂的或EDTA清洗細(xì)胞。在培養(yǎng)瓶背著細(xì)胞的一面加入清洗溶液，通過轉(zhuǎn)動(dòng)培養(yǎng)瓶1~2分鐘清洗細(xì)胞層，然后去除清洗液。

3. 加入消化，消化細(xì)胞與細(xì)胞，操作手法，試劑的效價(jià)有密切的關(guān)系，消化時(shí)應(yīng)注意觀察細(xì)胞形態(tài)，如細(xì)胞變得橢圓透亮，并且可以觀察到細(xì)胞與細(xì)胞間的間隙時(shí)，輕拍瓶身可以看見成流沙狀，即可中止消化，消化時(shí)盡量減少對細(xì)胞的吹打。

4. 當(dāng)細(xì)胞分離時(shí)，垂直放置培養(yǎng)瓶，讓細(xì)胞流到培養(yǎng)瓶的底部。在培養(yǎng)瓶中加入培養(yǎng)基中止消化，計(jì)數(shù)并再次培養(yǎng)細(xì)胞。

5. 對于無血清培養(yǎng)基，加入大豆抑制劑。通常使用1∶1（v∶v）0.25 mg/ml抑制劑到中將抑制活性。