簡介

蛋白質(zhì)的抽提是指破碎過程中，將生物材料在水，緩沖液或稀鹽溶液等適當溶劑中浸泡，使胞內(nèi)的蛋白質(zhì)等內(nèi)容物釋放到溶劑中。

與細胞總蛋白的提取實驗相似的是動物組織的總蛋白提取，它需要勻漿機或者研磨棒將組織塊分散，再加入裂解液并提取蛋白質(zhì)。

原理

細胞蛋白的提取是生物學實驗中一種常見的實驗方法，是很多其他生物學實驗的前提。通過加入裂解緩沖溶液以及相應的蛋白酶抑制劑，能較好的保持細胞內(nèi)生物大分子的天然狀態(tài)，在透膜劑以及超聲破碎儀的輔助下，細胞將發(fā)生破裂，內(nèi)容物釋放出來。

用途

1. 蛋白免疫印跡；

2. 蛋白免疫沉淀；

3. 核漿分離等制備型和分析型實驗。

材料與儀器

細胞、細胞刮、裂解液、槍頭、燒杯、超聲破碎儀，離心機，EP 管，制冰機，記號筆。

步驟

一、蛋白提取

1. 從培養(yǎng)箱中取出待提取的細胞，用吸引器洗掉培養(yǎng)基后，將培養(yǎng)皿置于冰上；

2. 往培養(yǎng)皿中加入適量的裂解液，并加入相應量的蛋白酶抑制劑，一般來說，12 孔板加入100 μL 裂解液，6 cm 皿加入 300-400 μL 裂解液，晃動培養(yǎng)皿，使得裂解液流過細胞表面；

3. 在冰上用細胞刮將細胞刮離培養(yǎng)皿，并收集到 1.5 mL EP 管中；

4. 在冰上超聲破碎細胞（根據(jù)儀器的功率調(diào)節(jié)），一般超聲 10-15 下即可；

5. 超聲好的細胞放入離心機中，12000 g，4℃，離心 15 分鐘；

6. 離心完后，取出 EP，小心的將上清液轉(zhuǎn)移至一干凈的 EP 管中，待用。

二、蛋白濃度的測定

1. 取 96 孔板，5 孔，每孔加入 10 μL 0.9% NaCl，最后一孔加入 10 μL 2 mg/ml 的 BSA 溶液，在倒數(shù)第二孔加入 10 μL BSA，用移液槍吹打混勻之后，吸出 10 μL 至倒數(shù)第三孔中，同樣操作一直至第二孔混勻后，棄 10 μL 溶液，此為標準曲線孔；

2. 另取孔，每孔 8 μL 0.9% NaCl 溶液，再加入 2 μL 提好的蛋白溶液；

3. 按照蛋白濃度測定試劑盒的說明配制好測定液，在上述濃度測定孔中每孔加入 200 μL 混合液，將平板放入 37℃ 生化箱中孵育 15-20 分鐘，再用酶標儀測定，做出標準曲線并計算每個蛋白樣品的濃度；

4. 提取好的蛋白上清液加入等量的 2 x loading buffer，并在沸水中煮沸 15 分鐘；

5. 一般細胞樣品按照 30 μg 的總上樣量計算出相應的上樣體積，記錄備用，并用于后續(xù)實驗。

注意事項

1. 有些蛋白容易降解，所以樣品需要一直放在冰上，樣品用完后短期負二十冰箱保存；

2. 勤換槍頭，避免交叉污染；

3. 超聲的次數(shù)和功率不能劇烈，容易使得蛋白斷裂；

4. 檢測磷酸化蛋白，盡量添加磷酸酶抑制劑；

5. 由于某些蛋白的特性，樣品不需要煮沸。

常見問題

1. 蛋白拖尾？

可能是超聲太過劇烈，并且超聲太過劇烈，對于一些小體積的樣本，非常容易造成樣品飛濺，損失樣品。

2. 蛋白濃度太低？上樣量太大？

應按照個人經(jīng)驗和不同細胞的特性，適當?shù)恼{(diào)整裂解液加入的體積，并且在最后可以加入 5 x loading buffer 來變性樣品。